一、操作步驟

 

　　1.準備實驗材料：跨膜細胞電阻儀、細胞培養器、細胞培養基、胰酶、離心管、移液器等。

 

　　2.細胞培養：將細胞種植在細胞培養器上，加入適量的細胞培養基。將培養器放入37℃、5%CO2的培養箱內培養，直至細胞達到適當的傳代比例。

 

　　3.裝載細胞：將細胞懸液用胰酶消化后，計數并調整細胞濃度。將一定數量的細胞懸液加入到儀器的上室和下室中，確保細胞能夠覆蓋整個膜表面。

 

　　4.測量電阻：將儀器接入恒溫水浴槽，保持溫度在37℃。使用移液器輕輕攪拌下室中的細胞懸液，以消除濃度極化現象。記錄初始電阻值。

 

　　5.數據分析：在一定時間內監測并記錄電阻值的變化，計算電阻的相對增減率。分析數據，評估細胞層的緊密連接和屏障功能。

 

　　二、注意事項

 

　　1.選擇合適的細胞株：不同類型的細胞株具有不同的生理功能和特性，因此在實驗前需充分了解所選細胞株的特性，以確保實驗結果的準確性。

 

　　2.維持適宜的培養條件：細胞的生長和分化受到諸多因素的影響，如溫度、濕度、pH值等。在實驗過程中，應嚴格控制這些條件，以保證細胞的正常生長。

 

　　3.避免污染：細胞培養過程中容易受到細菌、真菌等微生物的污染。因此，在操作過程中應嚴格遵守無菌操作規程，定期更換手套，并對實驗器皿進行消毒。

 

　　4.確保儀器的準確性：在使用前，應檢查儀器是否工作正常，測量電極是否潔凈。測量過程中，應避免電極與細胞或細胞培養基直接接觸，以免影響測量結果。

 

　　5.實驗結果的可靠性：實驗數據的準確性受多種因素影響，如操作誤差、測量時間、細胞密度等。因此，在實驗過程中應盡量減少誤差，重復測量并取平均值，以提高實驗結果的可靠性。